АНАЛИЗ МЕТОДОВ КАЧЕСТВЕННОГО ОБНАРУЖЕНИЯ И КОЛИЧЕСТВЕННОГО ОПРЕДЕЛЕНИЯ ПОЛИСАХАРИДОВ  В ЛЕКАРСТВЕННОМ РАСТИТЕЛЬНОМ СЫРЬЕ

УДК 615.32:547.458]:615.07
DOI: https://doi.org/10.52540/2074-9457.2026.1.22
Скачать статью

А. А. Осипова, А. А. Погоцкая

АНАЛИЗ МЕТОДОВ КАЧЕСТВЕННОГО ОБНАРУЖЕНИЯ И КОЛИЧЕСТВЕННОГО ОПРЕДЕЛЕНИЯ ПОЛИСАХАРИДОВ  В ЛЕКАРСТВЕННОМ РАСТИТЕЛЬНОМ СЫРЬЕ

Витебский государственный ордена Дружбы народов медицинский университет, г. Витебск, Республика Беларусь

В статье проанализированы результаты фармакогностических исследований отечественных и зарубежных авторов, данные современной научной литературы и обзорных статей, касающихся изучения растительных полисахаридов, в частности методов их выделения, качественного обнаружения и количественного определения в лекарственном растительном сырье (ЛРС). Приведены методы последовательного выделения различных групп полисахаридов из ЛРС. Обсуждены способы и оптимальные условия качественного обнаружения моносахаридных компонентов в лекарственных растениях с помощью метода тонкослойной хроматографии (ТСХ). Представлены фармакопейные методы количественного определения полисахаридов в ЛРС, исследования по разработке и модификации методик определения содержания полисахаридов методами химического (гравиметрия) анализа и физико-химическими (спектрофотометрия, высокоэффективная жидкостная хроматография (ВЭЖХ), капиллярный электрофорез (КЭ)) методами. Научные данные, проанализированные и обобщенные нами в ходе исследования, свидетельствуют о широком применении различных способов количественного определения комплекса полисахаридов и их компонентов, а также доказывают перспективность использования современных инструментальных методов анализа (ВЭЖХ, КЭ) при контроле качества ЛРС, содержащего углеводы.

Ключевые слова: полисахариды, моносахариды, лекарственное растительное сырье, тонкослойная хроматография, количественное определение.

SUMMARY

A. A. Osipova, A. A. Pahotskaya

ANALYSIS OF METHODS FOR QUALITATIVE DETECTION AND ASSAY OF POLYSACCHARIDES CONTAINED IN MEDICINAL PLANT RAW MATERIAL

The article analyzes the results of pharmacognostic studies of domestic and foreign authors, data from modern scientific literature and review articles related to the study of plant polysaccharides, in particular methods of their isolation, qualitative detection and assay in medicinal plant raw material. Methods for the sequential isolation of different groups of polysaccharides from medicinal plant raw material are presented. Methods and optimal conditions for qualitative detection of monosaccharide components in medicinal plants using thin-layer chromatography (TLC) are discussed. Pharmacopoeial methods of polysaccharides assay in medicinal plant raw material, research on the development and modification of methods for determining the content of polysaccharides by chemical (gravimetry) analysis and physico-chemical (spectrophotometry, high-performance liquid chromatography (HPLC), capillary electrophoresis (CE)) methods are presented. The scientific data analyzed and summarized during the study indicate widespread use of various methods of polysaccharides complex assay and their components, and also prove the prospect of using modern instrumental methods of analysis (HPLC, CE) in the quality control of medicinal plant raw material containing carbohydrates.

Keywords: polysaccharides, monosaccharides, medicinal plant raw material, thin-layer chromatography, assay.

ЛИТЕРАТУРА

1. Plant-based polysaccharides and their health functions / D. Singh, A. Rajput, A. Bhatia [et al.] // Functional foods in health and disease. – 2021. – Vol. 11, N 4. – P. 179–200. – DOI: 10.31989/ffhd.v11i5.773.

2. Govindarajan, S. Biological Activities of Plant Polysaccharides, Mechanism of Action and Biomedical Applications / S. Govindarjan, A. Noor // Research journal of biotechnology. – 2021. – Vol. 16, N 7. – P. 255–272. – DOI: 10.25303/167rjbt25521.

3. Cardiovascular Protective Effects of Plant Polysaccharides: A review / X. Dong, M. Zhou, Y. Li [et al.] // Frontiers in pharmacology. – 2021. – Vol. 12. – DOI: 10.3389/fphar.2021.783641. – URL: https://www.frontiersin.org/journals/pharmacology/articles/10.3389/fphar.2021.783641/full (date of access: 10.01.2026).

4. Antioxidant Activities of Natural Polysaccharides and Their Derivatives for Biomedical and Medicinal Applications / L. Bai, D. Xu, Y. M. Zhou [et al.] // Antioxidants. – 2022. – Vol. 11, N 12. – DOI: 10.3390/antiox11122491. – URL: https://www.mdpi.com/2076-3921/11/12/2491 (date of access: 10.01.2026).

5. Mohammed, A. S. A. Polysaccharides; Classification, Chemical Properties, and Future Perspective Applications in Fields of Pharmacology and Biological Medicine (A Review of Current Applications and Upcoming Potentiali-ties) / A. S. A. Mohammed, M. Naveed, N. Jost // Journal of polymers and the environment. – 2021. – Vol. 29, N 8. – P. 2359–2371. – DOI: 10.1007/s10924-021-02052-2. – URL: https://link.springer.com/article/10.1007/s10924-021-02052-2#citeas (date of access: 10.01.2026).

6. Бирюлин, С. И. Выделение углеводов из растительного сырья и их идентификация с применением капиллярного электрофореза / С. И. Бирюлин, Н. Е. Посокина, М. В. Тришканева // Овощи России. – 2019. – № 5. – С. 84–87. – DOI: 10.18619/2072-9146-2019-5-84–87.

7. Оленников, Д. Н. Методика количественного определения группового состава углеводного комплекса растительных объектов / Д. Н. Оленников, Л. М. Танхаева // Химия растительного сырья. – 2006. – № 4. – С. 29–33.

8. Бубенчиков, Р. А. Фенольные соединения и полисахариды фиалки собачьей / Р. А. Бубенчиков // Вестник Воронежского государственного университета. Серия: Химия, Биология. Фармация. – 2004. – № 1. – С. 156–159.

9. Мартынов, А. М. Фенольные соединения и водорастворимые полисахариды фиалки Патрэна / А. М. Мартынов, Т. Д. Даргаева // Сибирский медицинский журнал. – 2009. – Т. 90, № 7. – С. 213–215.

10. Бубенчикова, В. Н. Состав и отхаркивающая активность водорастворимых полисахаридных комплексов девясила иволистного / В. Н. Бубенчикова, А. В. Азарова // Научные ведомости Белгородского государственного университета. Серия: Естественные науки. – 2011. – № 9. – С. 189–191.

11. Optimization and use of a spectrophotometric method for determining polysaccharides in Echinacea purpurea / N. K. Glavač, I. J. Kosir, J. Rode, S. Kreft // Central European journal of biology. – 2012. – Vol. 7, N 1. – P. 126–131. – DOI: 10.2478/s11535-011-0091-z.

12. Федосеева, Л. М. Изучение некоторых водорастворимых соединений донника лекарственного травы (Melilotus officinalis L.) / Л. М. Федосеева, Т. А. Харлампович // Химия растительного сырья. – 2013. – № 2. – С. 153–157. – DOI: 10.14258/jcprm.1302153.

13. Analysis of the Monosaccharide Components in Angelica Polysaccharides by High Performance Liquid Chromatography / X. Yang, Y. Zhao, Q. Wang [et al.] // Analytical sciences. – 2005. – Vol. 21, N 10. – P. 1177–1180. – DOI: 10.2116/analsci.21.1177.

14. Попова, Т. С. Углеводы в почках и листьях черной смородины / Т. С. Попова, Н. С. Терёшина // Фармация. – 2013. – № 8. – С. 10–13.

15. Разработка методики количественного определения полисахаридов листьев березы / К. И. Ровкина, С. В. Кривощеков, А. М. Гурьев [и др.] // Медицинский вестник Башкортостана. – 2019. – Т. 14, № 1. – С. 47–50.

16. Разработка методики определения инулина в цикории растворимом натуральном после ферментативного гидролиза методом высокоэффективной жидкостной хроматографии / Д. О. Боков, Е. П. Хромченкова, М. С. Сокуренко [и др.] // Вопросы питания. – 2017. – Т. 86, № 5. – С. 50–55.

17. Бубенчикова, В. Н. Изучение полисахаридного и минерального состава герани кроваво-красной / В. Н. Бубенчикова, Ж. А. Булатникова // Научные ведомости Белгородского государственного университета. Серия: Естественные науки. – 2011. – № 9. – С. 200–202.

18. Изучение суммарного содержания антиоксидантов, полисахаридов, элементного состава и аминокислот растительного сырья смородины черной / С. Л. Аджиахметова, Н. М. Червонная, Д. И. Поздняков, Э. Т. Оганесян // Химия растительного сырья. – 2021. – № 3. – С. 265–274. – Doi: 10.14258/jcprm.2021037774.

19. Исследование полисахаридов побегов малины обыкновенной и их сорбционной активности / Д. К. Гуляев, В. Д. Белоногова, И. П. Рудакова, И. В. Коротков // Человек и его здоровье. – 2022. – Т. 25, № 3. – С. 72–80. – DOI: 10.21626/vestnik/2022-3/08.

20. Тринеева, О. В. Изучение углеводного комплекса плодов облепихи крушиновидной различными методами / О. В. Тринеева, А. И. Сливкин // Вестник Воронежского государственного университета. Серия: Химия, Биология. Фармация. – 2020. – № 2. – С. 91–98.

21. Тринеева, О. В. Сравнительная характериктика определения сахаров различными методами в листьях крапивы двудомной / О. В. Тринеева // Разработка и регистрация лекарственных средств. – 2020. – Т. 9, № 2. – С. 91–97. – DOI: 10.33380/2305-2066-2020-9-2-91–97.

22. Validation of a spectrophotometric methodology for the quantification of polysaccharides from roots of Operculina macrocarpa (jalapa) / M. A. M. Galvão, M. R. A. Ferreira, B. M. Nunes [et al.] // Revista brasileira de farmacognosia. – 2014. – Vol. 24, N 6. – P. 683–690. – DOI: 10.1016/j.bjp.2014.10.008.

23. Тринеева, О. В. Определения простых сахаров в лекарственном растительном сырье методом высокоэффективной тонкослойной хроматографии (на примере плодов облепихи крушиновидной и листьев крапивы двудомной) / О. В. Тринеева, А. И. Сливкин // Химия растительного сырья. – 2020. – № 1. – С. 215–222. – DOI: 10.14258/jcprm.2020015122.

24. Патент RU2642264, МПК G01N 30/90 (2006.01). Способ определения простых сахаров в тонком слое сорбента : № 2016110353 : заявлено 21.03.2016 : опубл. 24.01.2018 / Тринеева О. В., Сафонова Е. Ф., Сливкин А. И., Назарова А. А. ; заявители: Тринеева О. В., Сафонова Е. Ф., Сливкин А. И., Назарова А. А. – 17 с.

25. Neutral monosaccharide composition analysis of plant-derived oligo- and polysaccharides by high performance liquid chromatography / J. Yan, S. Shi, H. Wang [et al.] // Carbohydrate polymers. – 2016. – Vol. 136. – P. 1273–1280. – DOI: 10.1016/j.carbpol.2015.10.028. – URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/26572471/ (date of access: 19.01.2026).

26. Государственная фармакопея Республики Беларусь (ГФ РБ II) : разраб. на основе Европ. Фармакопеи : в 2 т. : введ. в действие с 1 июля 2016 г. приказом М-ва здравоохранения Респ. Беларусь от 31.03.2016 г. № 270. – Т. 2: Контроль качества субстанций для фармацевтического использования и лекарственного растительного сырья / М-во здравоохранения Респ. Беларусь, Центр экспертиз и испытаний в здравоохранении ; [под общ. ред. С. И. Марченко]. – Молодечно : Победа, 2016. – 1368 с.

27. Государственная фармакопея Российской Федерации XV издания / Институт фармакопеи и стандартизации в сфере обращения лекарственных средств. – URL: https://pharmacopoeia.regmed.ru/pharmacopoeia/izdanie-15/ (дата обращения: 12.01.2026).

28. Дьякова, Н. А. Разработка и валидация экспресс-методики выделения и количественного определения водорастворимых полисахаридов листьев лопуха большого (Arctium lappa L.) / Н. А. Дьякова // Х???? ????????????? ?????. ? 2018. ? ? 4. ? ?. 81?87. ? имия растительного сырья. – 2018. – № 4. – С. 81–87. – DOI: 10.14258/jcprm.2018042195.

29. Мсалли, Х. Определение полисахаридов в траве и корнях Althaea officinalis L., произрастающего на территории Астраханской области / Х. Мсалли, А. А. Цибизова // WORLD SCIENCE: PROBLEMS AND INNOVATIONS : сб. статей XII междунар. науч.-практ. конф., Пенза, 30 авг. 2017 г. / ред. Г. Ю. Гуляев. – Пенза : Наука и Просвещение, 2017. – С. 338–340.

30. Hromádková, Z. Comparison of classical and ultrasound-assisted extraction of polysaccharides from Salvia officinalis L. / Z. Hromádková, A. Ebringerova, P. Valachovic // Ultrasonics sonochemistry. – 1999. – Vol. 5, N 4. – P. 163−168. – DOI: 10.1016/S1350-4177(98)00046-7.

31. Разработка и валидация экспресс-методики выделения и количественного определения водорастворимых полисахаридов корней одуванчика лекарственного (Taraxacum officinale Wigg.) / Н. А. Дьякова, А. И. Сливкин, И. А. Самылина [и др.] // Химико-фармацевтический журнал. – 2018. – Т. 52, № 4. – С. 40–43. – DOI: 10.30906/0023-1134-2018-52-4-40-43.

32. Дьякова, Н. А. Разработка и валидация экспрессной методики выделения и количественного определения водорастворимых полисахаридов из корней девясила высокого / Н. А. Дьякова, С. П. Гапонов, А. И. Сливкин // Химия растительного сырья. – 2021. – № 1. – С. 63–70. – DOI: 10.14258/jcprm.2021017363.

33. Дьякова, Н. А. Разработка и валидация методики выделения и количественного определения водорастворимых полисахаридов из корней подсолнечника однолетнего / Н. А. Дьякова // Химия растительного сырья. – 2022. – № 4. – С. 59–66. – DOI: 10.14258/jcprm.20220410906.

34. Оленников, Д. Н. Разработка технологии получения экстракта подорожника большого сухого / Д. Н. Оленников, Л. М. Танхаева // Химия растительного сырья. – 2006. – № 1. – С. 49–54.

35. Оленников, Д. М. Методика количественного определения суммарного содержания полисахаридов в семенах льна (Linum usitatissimum L.) // Д. Н. Оленников, Л. М. Танхаева. – Химия растительного сырья. – 2007. – № 4. – С. 85–90.

36. Изучение углеводного состава синюхи голубой (Polemonium  coeruleum L.) / А. А. Гудкова, Г. Ю. Шестакова, А. И. Сливкин [и др.] // Химия растительного сырья. – 2021. – № 3. – С. 107–114. – DOI: 10.14258/jcprm.2021038795.

37. Гулина, Е. И. Валидация методик количественного определения полисахаридов Saussurea salicifolia L. / Е. И. Гулина, Ю. А. Николаева, А. В. Зыкова // Вестник Воронежского государственного университета. Серия: Химия, Биология. Фармация. – 2023. – № 4. – С. 11–17.

38. Кузьмичева, Н. А. Фитохимический анализ семян пажитника сенного / Н. А. Кузьмичева // Вестник фармации. – 2017. – № 2. – С. 23–31.

39. Analysis of water-soluble polysaccharides in an edible medicinal plant Epimedium: method development, validation, and application / H. F. Zhang, L. L. Niu, X. H. Yang, L. Li // Journal of AOAC International. – 2014. – Vol. 97, N 3. – P. 784–790. – DOI: 10.5740/jaoacint.12-379.

40. Количественное определение полисахаридов в корневищах аира болотного / А. П. Корж, А. М. Гурьев, М. В. Белоусов, М. С. Юсубов // Фармация. – 2011. – № 4. – С. 24–26.

41. Оленников, Д. Н. Методика количественного определения суммарного содержания полифруктанов в корнях лопуха (Arctium spp.) / Д. Н. Оленников, Л. М. Танхаева // Химия растительного сырья. – 2010. – № 1. – С. 115–120.

42. Танхаева, Л. М. Методика количественного определения суммарного содержания полифруктанов в корнях одуванчика лекарственного (Taraxacum officinale Wigg.) / Л. М. Танхаева, Д. Н. Оленников // Химия растительного сырья. – 2010. – № 2. – С. 85–89.

43. Митрофанова, И. Ю. Определение суммарного содержания полифруктанов и динамики их накомпления в корневищах и корнях девясила высокого (Inula helenium L.), произрастающего в Волгоградской области / И. Ю. Митрофанова, А. В. Яницкая // Химико-фармацевтический журнал. – 2013. – Т. 47,
№ 3. – С. 45–47. – DOI: 10.30906/0023-1134-2013-47-3-45-47.

44. Валидация методики количественного определения полисахаридов в таблетках «Иммунос» / С. Цэцэгмаа, Б. Баттулга, С. Бадамцэцэг [и др.] // Инновационные технологии в фармации : материалы Всерос. науч.-практ. конф. с междунар. участием, посвящ. 80-летию образования фармацевт. фак-та ИГМУ, Иркутск, 10 июня 2021 г. / Министерство здравоохранения Российской Федерации, Иркутский государственный медицинский университет ; под общ. ред. Е. Г. Приваловой. – Иркутск : Иркутский гос. мед. ун-т, 2021. – Вып. 8. – С. 139–143.

45. Soedjak, H. S. Colorimetric determination of carageenans and other anionis hydrocolloids with methylene blue / H. S. Soedjak // Analytical chemistry. – 1994. – Vol. 66, N 24. – P. 4514–4518. – DOI: 10.1021/AC00096A018.

46. Lee, J. M. Solid-phase colorimetric method for the quantification of fucoidan / J. M. Lee, Z. Shin, G. T. Mavlonov [et al.] // Applied biochemistry and biotechnology. – 2012. – Vol. 168, N 5. – P. 1019–1024. – DOI: 10.1007/s12010-012-9837-y.

47. Комова, С. И. Подходы к анализу и контролю качества растительных полисахаридов как потенциальных лекарственных средств и БАД / С. И. Комова, Е. С. Сурбеева // Молодая фармация – потенциал будущего : XIII Всерос. науч. конф. школьников, студентов и аспирантов с междунар. участием : сб. материалов конф., 1 марта – 11 апреля 2023 г. – Санкт-Петербург : Санкт-Петербургский государственный химико-фармацевтический университет, 2023. – С. 213–219.

48. Полисахаридный и аминокислотный состав наиболее распространенных видов лабазника / М. Ю. Круглова, Д. С. Круглов, М. А. Ханина, Н. С. Фурса // Медицина и образование в Сибири. – 2011. – № 5. – С. 14.

49. Quantitative analysis of polysaccharide composition in Polyporus umbellatus by HPLC–ESI–TOF–MS / N. Guo, Z. Bai, W. Jia [et al.] // Molecules. – 2019. – Vol. 24, N 14. – DOI: 10.3390/molecules24142526. – URL: https://www.mdpi.com/1420-3049/24/14/2526 (date of access: 16.01.2026).

50. Определение флавоноидов в надземной части мелиссы лекарственной и котовника кошачьего методом капиллярного электрофореза / Н. А. Толочилин, Ю. Г. Кураева, Л. А. Онучак, В. А. Куркин // Известия Саратовского университета. Новая серия. Серия: Химия. Биология. Экология. – 2025. – Т. 25, № 3. – С. 264–272. – DOI: 10.18500/1816-9775-2025-25-3-264-272.

51. Якуба, Ю. Ф. Определение глюкозы, сахарозы и фруктозы методом капиллярного электрофореза / Ю. Ф. Якуба, М. Г. Марковский // Вопросы питания. – 2015. – Т. 84, № 1. – С. 89–94. DOI

52. Optimized hydrolysis and analysis of Radis Asparagi polysaccharide composition by capillary zone electrophoresis / J. Chen, F. Yang, H. Guo [et al.] // Journal of separation science. – 2015. – Vol. 38. – P. 2327–2331. – DOI: 10.1002/jssc.201500120.

REFERENCES

1. Singh D, Rajput A, Bhatia A, Kumar A, Kaur H, Sharma P, et al. Plant-based polysaccharides and their health functions. Functional Foods in Health and Disease. 2021;11(4):179–200. doi: 10.31989/ffhd.v11i5.773

2. Govindarajan S, Noor A. Biological Activities of Plant Polysaccharides, Mechanism of Action and Biomedical Applications. Res J Biotechnol. 2021;16(7):255–72. doi: 10.25303/167rjbt25521

3. Dong X, Zhou M, Li Y, Ji H, Hu Q. Cardiovascular Protective Effects of Plant Polysaccharides: A review. Front Pharmacol. 2021;12. doi: 10.3389/fphar.2021.783641. URL: https://www.frontiersin.org/journals/pharmacology/articles/10.3389/fphar.2021.783641/full (date of access: 10.01.2026)

4. Bai L, Xu D, Zhou YM, Zhang YB, Zhang H, Chen YB, et al. Antioxidant Activities of Natural Polysaccharides and Their Derivatives for Biomedical and Medicinal Applications. Antioxidants (Basel). 2022;11(12). doi: 10.3390/antiox11122491. URL: https://www.mdpi.com/2076-3921/11/12/2491 (date of access: 10.01.2026)

5. Mohammed ASA, Naveed M, Jost N. Polysaccharides; Classification, Chemical Properties, and Future Perspective Applications in Fields of Pharmacology and Biological Medicine (A Review of Current Applications and Upcoming Potentialities). J Polym Environ. 2021;29(8):2359–71. doi: 10.1007/s10924-021-02052-2. URL: https://link.springer.com/article/10.1007/s10924-021-02052-2#citeas (date of access: 10.01.2026)

6. Biriulin SI, Posokina NE, Trishkaneva MV. Isolation of carbohydrates from plant materials and their identification using capillary electrophoresis. Ovoshchi Rossii. 2019;(5):84–7. doi: 10.18619/2072-9146-2019-5-84-87. (In Russ.)

7. Olennikov DN, Tankhaeva LM. Methodology for quantitative determination of the group composition of the carbohydrate complex of plant objects. Khimiia rastitel'nogo syr'ia. 2006;(4):29–33. (In Russ.)

8. Bubenchikov RA. Phenolic compounds and polysaccharides of dog violet. Vestnik Voronezhskogo gosudarstvennogo universiteta. Seriia: Khimiia, Biologiia. Farmatsiia. 2004;(1):156–9. (In Russ.)

9. Martynov AM, Dargaeva TD. Phenolic compounds and water-soluble polysaccharides of Patren's violet. Sibirskii meditsinskii zhurnal. 2009;90(7):213–5. (In Russ.)

10. Bubenchikova VN, Azarova AV. Composition and expectorant activity of water-soluble polysaccharide complexes of elecampane. Nauchnye vedomosti Belgorodskogo gosudarstvennogo universiteta. Seriia: Estestvennye nauki. 2011;(9):189–91. (In Russ.)

11. Glavač NK, Kosir IJ, Rode J, Kreft S. Optimization and use of a spectrophotometric method for determining polysaccharides in Echinacea purpurea. Cent Eur J Biol. 2012;7(1):126–31. doi: 10.2478/s11535-011-0091-z

12. Fedoseeva LM, Kharlampovich TA. Study of some water-soluble compounds of sweet clover (Melilotus officinalis L.). Khimiia rastitel'nogo syr'ia. 2013;(2):153–7. doi: 10.14258/jcprm.1302153. (In Russ.)

13. Yang X, Zhao Y, Wang Q, Wang H, Mei Q. Analysis of the Monosaccharide Components in Angelica Polysaccharides by High Performance Liquid Chromatography. Anal Sci. 2005;21(10):1177–80. doi: 10.2116/analsci.21.1177

14. Popova TS, Tereshina NS. Carbohydrates in blackcurrant buds and leaves. Farmatsiia. 2013;(8):10–3. (In Russ.)

15. Rovkina KI, Krivoshchekov SV, Gur'ev AM, Iusubov MS, Bezverkhniaia EA, Belousov MV. Development of a method for the quantitative determination of birch leaf polysaccharides. Meditsinskii vestnik Bashkortostana. 2019;14(1):47–50. (In Russ.)

16. Bokov DO, Khromchenkova EP, Sokurenko MS, Vasil'ev AV, Bessonov VV. Development of a method for determining inulin in natural soluble chicory after enzymatic hydrolysis using high-performance liquid chromatography. Voprosy pitaniia. 2017;86(5):50–5. (In Russ.)

17. Bubenchikova VN, Bulatnikova ZhA. Study of the polysaccharide and mineral composition of blood-red geranium. Nauchnye vedomosti Belgorodskogo gosudarstvennogo universiteta. Seriia: Estestvennye nauki. 2011;(9):200–2. (In Russ.)

18. Adzhiakhmetova SL, Chervonnaia NM, Pozdniakov DI, Oganesian ET. Study of the total content of antioxidants, polysaccharides, elemental composition and amino acids of black currant plant material. Khimiia rastitel'nogo syr'ia. 2021;(3):265–74. doi: 10.14258/jcprm.2021037774. (In Russ.)

19. Guliaev DK, Belonogova VD, Rudakova IP, Korotkov IV. Study of polysaccharides of common raspberry shoots and their sorption activity. Chelovek i ego zdorov'e. 2022;25(3):72–80. doi: 10.21626/vestnik/2022-3/08. (In Russ.)

20. Trineeva OV, Slivkin AI. Study of the carbohydrate complex of sea buckthorn fruits by various methods. Vestnik Voronezhskogo gosudarstvennogo universiteta. Seriia: Khimiia, Biologiia. Farmatsiia. 2020;(2):91–8. (In Russ.)

21. Trineeva OV. Comparative characteristics of the determination of sugars by various methods in stinging nettle leaves. Razrabotka i registratsiia lekarstvennykh sredstv. 2020;9(2):91–7. doi: 10.33380/2305-2066-2020-9-2-91-97. (In Russ.)

22. Galvão MAM, Ferreira MRA, Nunes BM, Santana ASC, Randau KP, Soares LAL. Validation of a spectrophotometric methodology for the quantification of polysaccharides from roots of Operculina macrocarpa (jalapa). Rev Bras Farmacogn. 2014;24(6):683–90. doi: 10.1016/j.bjp.2014.10.008

23. Trineeva OV, Slivkin AI. Determination of simple sugars in medicinal plant materials by high-performance thin-layer chromatography (using sea buckthorn fruits and stinging nettle leaves as an example). Khimiia rastitel'nogo syr'ia. 2020;(1):215–22. doi: 10.14258/jcprm.2020015122. (In Russ.)

24. Trineeva OV., Safonova EF, Slivkin AI, Nazarova AA, izobretateli. Method for determining simple sugars in a thin layer of sorbent. Patent RU2642264, MPK G01N 30/90 (2006.01). 2018 Janv 24. 17 s. (In Russ.)

25. Yan J, Shi S, Wang H, Liu R, Li N, Chen Y, et al. Neutral monosaccharide composition analysis of plant-derived oligo- and polysaccharides by high performance liquid chromatography. Carbohydr Polym. 2016;136:1273–80. doi: 10.1016/j.carbpol.2015.10.028. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/26572471/ (date of access: 19.01.2026)

26. Ministerstvo zdravookhraneniia Respubliki Belarus', Tsentr ekspertiz i ispytanii v zdravookhranenii. State Pharmacopoeia of the Republic of Belarus: v 2 t. Т. 2. Quality control of substances for pharmaceutical use and medicinal herbal raw materials. Marchenko SI, redactor. Molodechno, RB: Pobeda; 2016. 1368 s. (In Russ.)

27. Institut farmakopei i standartizatsii v sfere obrashcheniia lekarstvennykh sredstv. State Pharmacopoeia of the Russian Federation, 15th edition. URL: https://pharmacopoeia.regmed.ru/pharmacopoeia/izdanie-15/ (data obrashcheniia: 12.01.2026). (In Russ.)

28. D'iakova NA. Development and validation of a rapid method for the isolation and quantitative determination of water-soluble polysaccharides from burdock leaves (Arctium lappa L.). Khimiia rastitel'nogo syr'ia. 2018;(4):81–7. doi: 10.14258/jcprm.2018042195. (In Russ.)

29. Msalli Kh, Tsibizova AA. Determination of polysaccharides in the grass and roots of Althaea officinalis L., growing in the Astrakhan region. V: Guliaev GIu, redactor. WORLD SCIENCE: PROBLEMS AND INNOVATIONS: sb statei XII mezhdunar nauch-prakt konf, Penza, 30 avg 2017 g. Penza, RF: Nauka i Prosveshchenie; 2017. s. 338–40. (In Russ.)

30. Hromádková Z, Ebringerova A, Valachovic P. Comparison of classical and ultrasound-assisted extraction of polysaccharides from Salvia officinalis L. Ultrason Sonochem. 1999;5(4):163−8. doi: 10.1016/S1350-4177(98)00046-7

31. D'iakova NA, Slivkin AI, Samylina IA, Gaponov SP, Myndra AA, Shushunova TG. Development and validation of a rapid method for the isolation and quantitative determination of water-soluble polysaccharides from the roots of dandelion (Taraxacum officinale Wigg.). Khimiko-farmatsevticheskii zhurnal. 2018;52(4):40–3. doi: 10.30906/0023-1134-2018-52-4-40-43. (In Russ.)

32. D'iakova NA, Gaponov SP, Slivkin AI. Development and validation of a rapid method for the isolation and quantitative determination of water-soluble polysaccharides from the roots of Elecampane. Khimiia rastitel'nogo syr'ia. 2021;(1):63–70. doi: 10.14258/jcprm.2021017363. (In Russ.)

33. D'iakova NA. Development and validation of a method for the isolation and quantitative determination of water-soluble polysaccharides from the roots of annual sunflower. Khimiia rastitel'nogo syr'ia. 2022;(4):59–66. doi: 10.14258/jcprm.20220410906. (In Russ.)

34. Olennikov DN, Tankhaeva LM. Development of technology for obtaining dry plantain extract. Khimiia rastitel'nogo syr'ia. 2006;(1):49–54. (In Russ.)

35. Olennikov DN, Tankhaeva LM. Method for quantitative determination of total polysaccharide content in flax seeds (Linum usitatissimum L.). Khimiia rastitel'nogo syr'ia. 2007;(4):85–90. (In Russ.)

36. Gudkova AA, Shestakova GIu, Slivkin AI, Chistiakova AS, Agafonov VA, Chavro PV. Study of the carbohydrate composition of Polemonium coeruleum L. Khimiia rastitel'nogo syr'ia. 2021;(3):107–14. doi: 10.14258/jcprm.2021038795. (In Russ.)

37. Gulina EI, Nikolaeva IuA, Zykova AV. Validation of methods for quantitative determination of polysaccharides of Saussurea salicifolia L. Vestnik Voronezhskogo gosudarstvennogo universiteta. Seriia: Khimiia, Biologiia. Farmatsiia. 2023;(4):11–7. (In Russ.)

38. Kuz'micheva NA. Phytochemical analysis of fenugreek seeds. Vestnik farmatsii. 2017;(2):23–31. (In Russ.)

39. Zhang HF, Niu LL, Yang XH, Li L. Analysis of water-soluble polysaccharides in an edible medicinal plant Epimedium: method development, validation, and application. J AOAC Int. 2014;97(3):784–90. doi: 10.5740/jaoacint.12-379

40. Korzh AP, Gur'ev AM, Belousov MV, Iusubov MS. Quantitative determination of polysaccharides in calamus rhizomes. Farmatsiia. 2011;(4):24–6. (In Russ.)

41. Olennikov DN, Tankhaeva LM. Method for quantitative determination of total polyfructan content in burdock roots (Arctium spp.). Khimiia rastitel'nogo syr'ia. 2010;(1):115–20. (In Russ.)

42. Tankhaeva LM, Olennikov DN. Method for quantitative determination of total polyfructan content in dandelion roots (Taraxacum officinale Wigg.). Khimiia rastitel'nogo syr'ia. 2010;(2):85–9. (In Russ.)

43. Mitrofanova IIu, Ianitskaia AV. Determination of the total content of polyfructans and the dynamics of their accumulation in the rhizomes and roots of elecampane (Inula helenium L.) growing in the Volgograd region. Khimiko-farmatsevticheskii zhurnal. 2013;47(3):45–7. doi: 10.30906/0023-1134-2013-47-3-45-47. (In Russ.)

44. Tsetsegmaa S, Battulga B, Badamtsetseg S, Ganchimeg G, Lkhaasuren R, Baianmunkh A, et al. Validation of a method for the quantitative determination of polysaccharides in Immunos tablets. V: Ministerstvo zdravookhraneniia Rossiiskoi Federatsii, Irkutskii gosudarstvennyi meditsinskii universitet; Privalova EG, redactor. Innovatsionnye tekhnologii v farmatsii. Materialy Vseros nauch-prakt konf s mezhdunar uchastiem, posviashch 80-letiiu obrazovaniia farmatsevt fak-ta IGMU, Irkutsk, 10 iiunia 2021 g. Irkutsk, RF: Irkutskii gos med un-t; 2021. Vyp. 8. s. 139–43. (In Russ.)

45. Soedjak HS. Colorimetric determination of carageenans and other anionis hydrocolloids with methylene blue. Anal Chem. 1994;66(24):4514–8. doi: 10.1021/AC00096A018

46. Lee JM, Shin Z, Mavlonov GT, Abdurakhmonov IY, Yi TH. Solid-phase colorimetric method for the quantification of fucoidan. Appl Biochem Biotechnol. 2012;168(5):1019–24. doi: 10.1007/s12010-012-9837-y

47. Komova SI, Surbeeva ES. Approaches to the analysis and quality control of plant polysaccharides as potential drugs and dietary supplements. V: Molodaia farmatsiia – potentsial budushchego: XIII Vseros nauch konf shkol'nikov, studentov i aspirantov s mezhdunar uchastiem : sb materialov konf, 1 marta – 11 aprelia 2023 g. Sankt-Peterburg, RF: Sankt-Peterburgskii gosudarstvennyi khimiko-farmatsevticheskii universitet; 2023. s. 213–219. (In Russ.)

48. Kruglova MIu, Kruglov DS, Khanina MA, Fursa NS. Polysaccharide and amino acid composition of the most common species of meadowsweet. Meditsina i obrazovanie v Sibiri. 2011;(5):14. (In Russ.)

49. Guo N, Bai Z, Jia W, Sun J, Wang W, Chen S, et al. Quantitative analysis of polysaccharide composition in Polyporus umbellatus by HPLC–ESI–TOF–MS. Molecules. 2019;24(14). doi: 10.3390/molecules24142526. URL: https://www.mdpi.com/1420-3049/24/14/2526 (date of access: 16.01.2026)

50. Tolochilin NA, Kuraeva IuG, Onuchak LA, Kurkin VA. Determination of flavonoids in the aerial parts of lemon balm and catnip by capillary electrophoresis. Izvestiia Saratovskogo universiteta. Novaia seriia. Seriia: Khimiia. Biologiia. Ekologiia. 2025;25(3):264–72. doi: 10.18500/1816-9775-2025-25-3-264-272. (In Russ.)

51. Iakuba IuF, Markovskii MG. Determination of glucose, sucrose and fructose by capillary electrophoresis. Voprosy pitaniia. 2015;84(1):89–94. (In Russ.)

52. Chen J, Yang F, Guo H, Wu F, Wang X. Optimized hydrolysis and analysis of Radis Asparagi polysaccharide composition by capillary zone electrophoresis. J Sep Sci. 2015;38:2327–31. doi: 10.1002/jssc.201500120

Адрес для корреспонденции:

210009, Республика Беларусь,

г. Витебск, пр. Фрунзе, 27,

УО «Витебский государственный ордена

Дружбы народов медицинский университет»,

кафедра фармакогнозии и ботаники,

е-mail: gnozia20vgmu@mail.ru,

Осипова А. А.

Поступила 02.03.2026 г.